Информация для гастроэнтерологов по взятию биоматериала для микробиологических исследований

ПРАВИЛА СБОРА КАЛА ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА (ДИСБАКТЕРИОЗ)

Все обследуемые пациенты за 1-3 дня до взятия пробы должны находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике и молочно-кислые продукты, также алкоголь, антибиотики и бактерийные препараты (содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки и т.д.).

Материалом служит кал после естественной дефекации, который собирают в чистый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой.

Не рекомендуется собирать кал из унитаза.

Собирают кал на чистую поверхность, в качестве которой может быть использован чистый новый лист (пакет) из полиэтилена или бумаги (этот способ является предпочтительным).

При использовании судна, его предварительно хорошо промывают с мылом и губкой, ополаскивают многократно водопроводной водой, а потом обдают кипятком и остужают.

Кал берут преимущественно из средней порции специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного контейнера, в количестве не более 1/3 от объема контейнера. Не наполняйте контейнер доверху. Тщательно закройте крышку.

Срок и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Для правильной оценки результатов рекомендуется проведение 2-3-кратных исследований с интервалом 1-2 дня.

ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА НА ПАТОГЕННУЮ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННУЮ МИКРОФЛОРУ

Взятие проб кала должно осуществляться на ранних этапах болезни, пока патогенные микробы содержатся в материале в большом количестве.

Для сбора кала пациенту выдается контейнер с крышкой и ложечкой.

Если пациент собирает кал дома, ему нужно выдать инструкцию (см. выше), где изложены правила сбора и предупредить о том, что материал должен быть доставлен в лабораторию, как можно быстрее.

Если кал собирается в условиях медицинского центра и доставка не может быть осуществлена в кратчайший срок, для сохранности материала используют транспортную систему со средой Cary Blair. Тампон погружают в фекалии поочередно в нескольких местах, после чего он погружается в пробирку с транспортной средой. Нет необходимости переносить кусочки кала.

Если кал собираются исследовать только на золотистый стафилококк или грибы, то в качестве транспортной среды может быть использована среда Эймс с углем.

При исследовании кала на ротавирус и Clostridium difficile жидкий кал доставляется только в контейнере, а не на тампоне.

Хранение кала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Кал в стерильном контейнере с момента его получения до переноса в транспортную среду может храниться при комнатной температуре не более 2-х часов.

ИССЛЕДОВАНИЕ РЕКТАЛЬНОГО СОДЕРЖИМОГО

Перед взятием мазка проводится тщательный туалет с мылом и водой области вокруг анального отверстия для снижения контаминации пробы.

Осторожно вводят тампон на 2,5 см вглубь анального сфинктера и аккуратно вращают его в течение 10 секунд для получения материала с анальных складок, после чего помещают в пробирку с транспортной средой Cary Blair.

Если цель исследования посев на гонорею, мазок берут аналогичным образом в транспортную среду Эймс с углем.

Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЖЕЛЧЬ

Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки с плотно закрывающимися крышками.

Полученные порции желчи желательно доставить в лабораторию не позднее 1-2 ч от момента взятия.

При невозможности доставить материал в указанный срок, допускается хранение.

Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОМЫВНЫХ ВОД, ЛАВАЖА (ИЗ ЖЕЛУДКА)

Материал собирается рано утром, до еды, пока пациент еще в постели.

Вводят назо-гастральный зонд через нос в желудок.

Желудок промывают 25-50 мл охлажденной дистиллированной водой.

Далее жидкость отсасывается и помещается в стерильный контейнер. Крышку плотно закрывают.

Аккуратно, следуя правилам, удаляют зонд.

Материал может храниться не более 2-х часов при комнатной температуре и не более 24-х часов при 2-8С.

АБДОМИНАЛЬНАЯ И ПЕРИТОНЕАЛЬНАЯ ЖИДКОСТИ

1-2% раствором йода дезинфицируют кожу в области манипуляции.

Посредством чрезкожной пункции (или во время операции) жидкость набирается в шприц.

Важно набрать большой объем жидкости (сколько возможно)! Полученную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают.

Допустимо использовать для транспорта и культивирования флаконы для гемокультур, тогда соблюдают те же правила, что и при взятии крови (в этом случае следует заказать исследование № 438).

Материал хранят в тепле и доставляют в лабораторию силами заказчика при температуре 35С.

ПРАВИЛА СБОРА ГРУДНОГО МОЛОКА

Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).

Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т.к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер с красной крышкой, старайтесь при этом не касаться краёв контейнера телом.

Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер. После сцеживания плотно закройте крышку, стараясь не дотрагиваться краев контейнера руками.

Промаркируйте каждый контейнер, указав фамилию, инициалы, дату рождения, на каждом контейнере необходимо указать: «правая молочная железа» или «левая молочная железа».

Молоко до отправки в лабораторию должно храниться в холодильнике не более 24-х часов.